Resumen:
Se colectaron muestras de plantas con síntomas de enfermedades virales,
áfidos y controladores biológicos en las localidades dePedro Carbo, Taura
(Guayas) y Santa Elena. La identificación de las especies virales se realizó
mediante pruebas ELISA-DAS en las que se emplearon diagnosticadores
específicos para la detección deSqMV, CMV, ToMV, TEV, TMV, PVY,
WSMoV, WMV-2, TSWVy de PRSV producidos por Agdia Inc. (Indiana, EU).
A partir de los insectos colectados se establecieron colonias en plantas de
melón sanas mantenidas en el invernadero del CIBE, en cajas entomológicas
de 60 x 70 x 150 cm.Para la identificación de las especies de áfidos, se
realizó el aclaramiento y montaje de los especímenes siguiendo el método de
Hill Ris Lamber (Smith, 1963); se emplearon claves taxonómicas,
considerando características específicas de la cabeza, cornículos y cauda de
cada espécimen. Se establecieron colonias puras con las especies de áfidos
identificados.
Las pruebas de transmisión viral mediante insectos se realizó con la
descendencia áptera de dos especies de áfidos obtenidas de las colonias
puras previamente establecidas; los áfidos fueron sometidos a una (1) hora
de ayuno; cumplido ese período, fueron retirados y colocados en plantas de
melón viróticas (SqMV) para el período de adquisición de cinco (5) minutos.
Se empleó un pincel -000 corona- delineador humedecido para la
III
manipulación de los insectos. Se colocaron los áfidos infectivos en plantas
sanas de melón para el período de inoculación de 5 minutos de acuerdo a lo
sugerido por Kalleshwaraswamy (2008). Quince después de la inoculación
biológica, se comprobó la infección de las plantas mediante las pruebas
inmunoquímicas de ELISA-DAS. Los valores fueron sometidos a un Análisis
de la varianza.
La identificación de los enemigos naturales se realizó mediante el uso de
claves taxonómicas de enemigos naturales. La identidad de las especies fue
comprobada por especialistas del Instituto Nacional Autónomo de
Investigaciones Agropecuarias
1
.
Se comprobó la presencia de Squash Mosaic Virus (11,42 % del total de
muestras evaluadas) afectando a cultivos de ciclo corto entre los cuales
están: C. melo, C. lanatus, C. annum y Centrosoma sp. Se detectaron
además otras especies virales como: Cucumber Mosaic Virus, Papaya
Ringspot Virus-W, Watermelon Mosaic Virus-2.
Las especies de pulgones identificadas corresponden a A. gossypii Glover y
M. persicae Sulzer, ambos son importantes especies transmisoras de virus, y
además están en capacidad de formar colonias sobre las especies vegetales
en estudio. El vector A. gossypii presentó un porcentaje de transmisión de 10,84%±
0,031, bajo condiciones semicontroladas. Especialistas de la Universidad de
Georgia [57] y Colorado certifican la posibilidad de la transmisión de SqMV
por este vector (Howard Schwartz, comunicación personal). M. persicae no
es capaz de transmitir el virus.
Se identificaron diez especies de coleópteros depredadores pertenecientes a
la familia coccinellidae, todos están en capacidad de alimentarse de las dos
especies de pulgones en estudio, los insectos corresponden a: Brumus
quadripustulatus, Scymnus sp, Psyllobora confluens, Psyllobora sp, Cyra sp,
Coccinella sp, Microweisea sp, Cycloneda munda, Paraneda pallidula y
Tenuisvalvae bromelicola.Otros insectos predadores corresponden a: Orius
insidiosus y Pseuodorus clavatus, las ninfas y adultos de O. insidiosus, y solo
las larvas de P. clavatus se alimentan de pulgones.Se determinó la identidad
de una especie de parasitoide de pulgones que corresponde a Lysiphlebus
testaceipes. Los hongos entomopatógenos de las especies de pulgones en
estudio corresponden a: Nomuraea rileyi y Aspergillus ochraceus.